Н ОВЫЕ ПУБЛИКАЦИИ РЕСУРСА в 2026 г. Начальный этап сбора сведений о LCF , накопленный до 20-го века, в целом завершен. Далее планируется анализ и синтез тематической информации, с добавлением сведений 20-21-го века. Работа будет сосредоточена прежде всего на: профилактике, диагностике, артроскопии, пластике, эндопротезировании. 04 .01.2026 2008BacheCE_TorodeIP. В статье описан способ транспозиции проксимального крепления LCF при врожденном вывихе бедра. 2021PaezC_WengerDR . В статье проанализированы результаты открытой реконструкция LCF при дисплазии. 2008DoddsMK_McCormackD . В статье описан эксперимент реконструкции LCF у свиней с формированием бедренного туннеля. 2011HosalkarHS_WengerDR . В статье описан способ изоцентрического крепления проксимального конца LCF при пластике в эксперименте на свиньях. 2018 WhiteBJ _ HerzogMM . Описан случай реконструкции LCF с использованием сухожильного трансплантата. 2020MagisterSJ_LiuRW....
Перевод статьи Abibe RB et al. Ligamentum teres reconstruction using autogenous semitendinosus tendon with toggle technique in rabbits (Реконструкция круглой связки с использованием аутогенного сухожилия полусухожильной мышцы с применением техники фиксации у кроликов, 2023). В статье описана экспериментальная реконструкция ligamentum capitis femoris (LCF) у кроликов. Оригинал на английском языке доступен по ссылке:
Реконструкция
круглой связки с использованием аутогенного сухожилия полусухожильной мышцы с
применением техники фиксации у кроликов
Abibe RB, Rahal SC, Reis Mesquita LD, Doiche D, da Silva JP, Mamprim MJ,
Pinho RH, Battazza A, Alves CEF, Saunders WB
Содержание [i] Резюме [ii] Введение [iii] Материалы и методы [iv] Результаты [v] Обсуждение [vi] Вывод [vii] Иллюстрации [viii] Дополнительная информация [ix] Список литературы [x] Приложения |
Введение
Традиционно круглая связка (КС) считалась рудиментарной или избыточной структурой у человека; однако, на основании новых исследований и развития артроскопии тазобедренного сустава, повреждение КС рассматривается как источник боли в тазобедренном суставе. Поэтому реконструкция КС может быть полезна в некоторых случаях. Кролики часто используются в качестве модели для реконструкции краниальной крестообразной связки, но исследований по реконструкции круглой связки мало.
Цель
Оценить возможность использования полусухожильной мышцы для замены круглой связки с помощью техники «переключателя», используя кроликов в качестве экспериментальной модели.
Методы
Двадцать шесть самок норфолкских кроликов в возрасте около 3 месяцев были разделены на две равные группы после удаления круглой связки (LT) из правого тазобедренного сустава: G1 — без реконструкции LT и капсулорафии; G2 — двойная реконструкция — пучок LT с использованием аутотрансплантата из сухожилия полусухожильной мышцы. В обеих группах LT была удалена из правого тазобедренного сустава. В группе G2 аутотрансплантат был взят с левой задней конечности того же кролика. Кролики были обследованы клинически через разные промежутки времени: до операции (M1), через 48 ч (M2), 15 дней (M3), 30 дней (M4) и 90 дней (M5) после операции.
Результаты
Кролики в обеих группах опирались на землю. В качестве осложнений процедуры, у четырех кроликов в группе G1 были выявлены подвывихи тазобедренных суставов при рентгенологическом исследовании; у трех — через M4 и у одного — через M5. В группе G2 были выявлены два вывиха тазобедренных суставов на уровне M3 и один подвывих на уровне M4. При ультразвуковом исследовании у 30,8% кроликов с подвывихами тазобедренных суставов наблюдалась неровная суставная поверхность. Макроскопическое исследование выявило целостность сухожильного трансплантата у 76,92% кроликов. Гистологический анализ показал адгезию трансплантата к кости на ранней стадии, состоящую из коллагеновых волокон, напоминающих шарпеевские волокна.
Вывод
Двухпучковая реконструкция LT
с использованием аутологичного сухожилия полусухожильной мышцы в сочетании с
фиксирующим стержнем показывает раннюю фазу лигаментизации сухожильного
трансплантата через 90 дней после операции у молодых кроликов, однако следует
учитывать биомеханические воздействия на сухожилие во время ходьбы.
У человека связка головки бедренной кости, или круглая связка (LT), традиционно считалась рудиментарной или избыточной структурой, не имеющей биомеханической функции и даже васкуляризации, особенно в тазобедренном суставе взрослых людей (Cerezal et al., 2010). Из-за неопределенной функции связка часто удалялась при хирургических вмешательствах, требующих вывиха бедра (Philippon, Pennock & Gaskill, 2012). В связи с развитием исследований ее структуры и совершенствованием артроскопии тазобедренного сустава, повреждение круглой связки стало рассматриваться как источник боли в бедре у активных пациентов из-за большого количества свободных нервных окончаний (Byrd & Jones, 2004).
На основании артроскопического анализа были выделены три группы повреждений LT: полный разрыв, обычно связанный с травматическим эпизодом или хирургическим вмешательством; Частичный разрыв наблюдается у пациентов с предшествующей историей болей в суставах и дегенеративным разрывом связок, связанным с остеоартрозом (Gray & Villar, 1997). Некоторые авторы предполагают, что пациенты с некоторой степенью ослабления суставной капсулы вследствие микротравмы, вызванной повторяющимися движениями, или с полным или почти полным разрывом LT вследствие травматических или нетравматических причин могут получить пользу от реконструкции LT (Amenabar & O’Donnell, 2012). Процедура показала хорошие результаты в отчетных случаях, когда для замены LT использовались аутотрансплантаты или аллотрансплантаты из сухожилия полусухожильной мышцы (Amenabar & O’Donnell, 2012; Lindner et al., 2012), аллотрансплантаты из передней большеберцовой мышцы (White, Scoles & Herzog, 2018) или аллотрансплантаты из сухожилия задней большеберцовой мышцы (O’Donnell, Klaber & Takla, 2020).
С другой стороны, после расщепления LT у животных наблюдалось увеличение смещения тазобедренного сустава (Cerezal et al., 2010; O’Donnell et al., 2014). Вывих бедра является распространенной травмой у собак и кошек, принадлежащих владельцам, составляя до 90% всех вывихов у этих видов (DeCamp et al., 2016). Во всех случаях разрыв LT происходит одновременно с разрывом части суставной капсулы (Tomlinson, 2014). В таких случаях вправление и стабилизация вывиха бедра проводились с использованием закрытых или открытых методик (Harasen, 2005; Moores, 2006; Tomlinson, 2014; DeCamp et al., 2016; Meeson & Strickland, 2021). Были описаны внутрисуставные или внесуставные хирургические методики и хирургические процедуры, изменяющие околосуставную мускулатуру и поддерживающие структуры (Harasen, 2005). Стабилизация с помощью стержня-фиксатора (переключателя) — это одна из внутрисуставных методик, при которой LT заменяется шовным материалом (монофиламентным нейлоном или плетеным мультифиламентом) и соответствующим якорем (Harasen, 2005; Moores, 2006; Pratesi, Grierson & Moores, 2012; Kieves et al., 2014; Meeson & Strickland, 2021).
Кролики часто используются в
качестве модели для реконструкции краниальной крестообразной связки
(Blickenstaff, Grana & Egle, 1997; Bachy et al., 2013; Giordano et al., 2015),
но исследований по реконструкции латеральной связки, или даже клинических
случаев, немного (Baek et al., 2018; Gallego & Villaluenga, 2019;
Marinkovich et al., 2019). Таким образом, целью данного исследования было
оценить возможность замены LT сухожилием полусухожильной мышцы с помощью
техники фиксации, используя кроликов в качестве экспериментальной модели.
Гипотеза заключалась в том, что четвероногое положение и прыжковая походка
кроликов могут препятствовать деградации трансплантата.
Субъекты
В исследовании были использованы 26 самок норфолкских кроликов в возрасте приблизительно 3 месяцев, весом от 1,6 до 2,9 кг. Животные были получены из Центра экспериментальных животных (ЦЭЖ) Государственного университета Сан-Паулу (UNESP), кампус Ботукату. ЦЭЖ связан с кафедрой животноводства — кролики и животные из биотерия находятся в том же учреждении.
После анализа крови (АК) кролики были случайным образом разделены на две равные группы для оценки предыдущего состояния здоровья: G1 — без реконструкции LT и капсулорафии, G2 — с реконструкцией LT с использованием аутотрансплантата из сухожилия полусухожильной мышцы. Каждый кролик содержался в отдельной клетке (60 × 60 × 60 см) без ограничения движений, в условиях температуры около 27 °C, контролируемой вытяжными вентиляторами и освещением, в течение 12 часов в сутки. Животные и клетки были идентифицированы по номеру и группе кроликов. Окружающая среда была обогащена водой из ниппельных водопроводов, глиняными кормушками и листьями бананового дерева. Шишки давали один раз в неделю. Все процедуры данного исследования проводились в Ветеринарной клинике UNESP.
Анестезия и хирургические
процедуры
Кроликам внутримышечно вводили кетамин (30 мг/кг, Dopalen; Lab. CEVA, Rockville, MD, USA) в сочетании с морфином (2 мг/кг, Dimorf; Cristalia, Itapira, Brazil) и мидазоламом (2 мг/кг, Dormire; Cristalia, Itapira, Brazil). Примерно через 10 минут проводили эпидуральную анестезию 2% лидокаином (Xylestesin; Cristalia, Itapira, Brazil). Затем кроликам проводили интубацию для поддержания анестезии изофлураном (Изофорин; Cristalia, Итапира, Бразилия) под наблюдением сертифицированного анестезиолога. Мониторинг анестезии включал частоту сердечных сокращений и дыхания, периферическую сатурацию кислорода в гемоглобине, фракцию выдыхаемого CO2 (EtCO2) (многопараметрический монитор), неинвазивное систолическое артериальное давление (допплеровское ультразвуковое исследование) и ректальную температуру (цифровой термометр).
В группе G1 для доступа к правому тазобедренному суставу использовался краниолатеральный доступ. Была выполнена частичная тенотомия глубокой ягодичной мышцы. Суставная капсула была идентифицирована и рассечена вдоль вентрального края вертлужной впадины, при этом необходимо было соблюдать осторожность, чтобы не повредить хрящ. LT была иссечена скальпелем № 11, и головка бедренной кости была вывихнута. После репозиции головки бедренной кости в вертлужную впадину суставная капсула была закрыта простым прерывистым швом с использованием полиглактина 910, размер 5-0. Для повторного прикрепления сухожилия глубокой ягодичной мышцы использовался крестообразный шов. Остальная часть закрытия была выполнена обычным способом.
В группе G2 был сделан продольный разрез длиной 5 см на медиальной стороне левой задней конечности, от медиального надколенника бедренной кости до медиальной лодыжки. Было идентифицировано сухожилие полусухожильной мышцы, тщательно отделено от окружающих тканей и выделено по всей его длине (файл S1). Фасция и мягкие ткани в месте выделения были закрыты простым непрерывным швом с использованием монофиламентной нейлоновой нити 3-0. Кожные покровы были сопоставлены простым непрерывным внутрикожным швом с использованием того же шовного материала.
После выделения сухожилие было сложено на две равные части (рис. 1А). На сложенном конце трансплантата была наложена петля из нейлоновой нити 2-0 (рис. 1B). Свободные концы нейлоновой нити были продеты через петлю и натянуты (рис. 1C) для использования в заднем положении в стержне. Два свободных конца трансплантата были зафиксированы вместе с другими нейлоновыми нитями 2-0 (рис. 1D и 1E). Вокруг концов трансплантата были сделаны две петли (рис. 1F), и один из свободных концов нити был продет внутрь петель (рис. 1G). Затем оба конца нити были натянуты и завязаны хирургическим узлом (рис. 1H) для использования в заднем положении в шовном фиксаторе. Одновременно с подготовкой трансплантата ассистентом был выполнен доступ к правому тазобедренному суставу, как в G1. Длина трансплантата составляла в среднем 5,5 см, а ширина — от 2 до 4 мм. В области начала LT в вертлужной впадине было просверлено отверстие диаметром 3,2 мм для размещения стержня-фиксатора и трансплантата, а также просверлен костный канал (сверлом 2,5 мм), начинающийся на уровне третьего трохантера, центрированный на шейке бедренной кости и направленный к ямке головки бедренной кости с помощью С-образного направляющего устройства. Трансплантат был прикреплен к стержню-фиксатору (2,5 × 8 мм), который был введен через вертлужную впадину. После того, как стержень-фиксатор был установлен на медиальной стороне вертлужной впадины, трансплантат был проведен через костный канал от головки бедренной кости к трохантеру с помощью проводника для швов. Затем на сухожилие было натянуто, и оно было привязано к пуговице на латеральной стороне бедренной кости. Иллюстративная схема подготовки трансплантата из сухожилия полусухожильной мышцы с использованием техники двойного пучка представлена на рис. 1 и в файле S2.
В обеих группах при индукции анестезии и в течение 5 последовательных дней после операции подкожно вводили энрофлоксацин (10 мг/кг подкожно каждые 24 часа, Байтрил; Bayer, Леверкузен, Германия), трамадол хлоргидрат (10 мг/кг каждые 12 часов, Трамадол; Джон Мартин, Чикаго, Иллинойс, США) и мелоксикам (0,5 мг/кг каждые 24 часа, Максикам; Оурофино, Кравиньюс, Бразилия).
Клинические оценки и
визуализационные исследования
Кроликов оценивали до операции (M1), через 48 часов (M2), 15 дней (M3), 30 дней (M4) и через 90 дней (M5) после операции с помощью визуального анализа походки (наличие или отсутствие хромоты и/или прыжков) (Miwa & Carrasco, 2019; McClure, 2020). Для визуального анализа походки каждое животное извлекали из клетки и позволяли ему свободно передвигаться в тихом месте с бетонным полом.
За исключением M2, рентгенографическое и ультразвуковое исследования правого тазобедренного сустава проводились в те же временные точки. Рентгенограммы выполнялись в расширенных вентродорсальных и правосторонних медиолатеральных проекциях. Для получения изображений использовалась цифровая рентгенографическая система (SR 8100; SIUI, Шаньтоу, Китай). Оценивалось наличие вывиха или подвывиха тазобедренного сустава, положение фиксатора и признаки инфекции. Ультразвуковое исследование (LOGIQ, GE Healthcare, Чикаго, Иллинойс, США) использовалось для оценки толщины суставной капсулы, конгруэнтности сустава, ровности суставной поверхности, наличия остеофитов и организации мышц. Изображения получали с помощью линейного датчика 8–13 МГц. Рентгенографические изображения оценивал опытный специалист, а ультразвуковые — другой.
Макроскопическое и
гистологическое исследование
Через 90 дней после операции все кролики были эвтаназированы. Для эвтаназии кроликам проводили диссоциативную анестезию с помощью гидрохлорида ксилазина (1 мг/кг, Xilazin; Syntec, Лондон, Англия) и кетамина (50 мг/кг), вводимых внутримышечно в том же шприце. Затем внутривенно вводили пропофол (Propovan; Cristalia, Итапира, Бразилия) до остановки дыхания, после чего внутривенно вводили 19,1% раствор хлорида калия (Cloreto de potassio; Samtec, Нью-Олбани, Индиана, США) до остановки сердца. Все животные из обеих групп были эвтаназированы для сравнения результатов обоих методов лечения при макроскопическом и гистологическом исследовании, с учетом необходимого количества образцов.
В обеих группах проводилась макроскопическая оценка толщины суставной капсулы правого тазобедренного сустава (слабая, умеренная или выраженная); Повреждение суставного хряща головки бедренной кости (степень 0 — неповрежденная поверхность, степень 1 — поверхностный дефект, степень 2 — глубокий дефект, степень 3 — эрозия с обнажением субхондральной кости) (Yoshioka et al., 1996); периартикулярные остеофиты и ремоделирование кости головки бедренной кости (легкое или интенсивное).
Тазобедренный сустав группы G2 фиксировали в 10% буферном растворе формалина в течение 48 часов, затем в растворе азотной кислоты до декальцинации (Bancroft & Gamble, 2008). Нейтрализацию проводили путем погружения декальцинированной кости в 10% буферный раствор формалина на 3 часа. Образцы разрезали на срезы толщиной 4 мкм и окрашивали гематоксилином и эозином. Организацию и толщину соединительных волокон суставной капсулы и сухожильно-костного интерфейса оценивали с помощью световой микроскопии.
Статистический анализ
Значения массы тела анализировались с использованием t-критерия Стьюдента для независимых выборок.
Статистическая значимость устанавливалась на уровне p < 0,05. Данные анализировались с помощью статистического программного обеспечения Minitab.
Клинические оценки и
исследования с помощью методов визуализации
Статистически значимой разницы в массе тела между группами G1 (2 ± 0,4 кг) и G2 (2,2 ± 0,4 кг) не наблюдалось (файл S3). У одного кролика из группы G2 был перелом бедренной кости на уровне M3, после чего была проведена эвтаназия. Хромота не наблюдалась в обеих группах, но у кроликов из группы G2 до уровня M3 отмечались большие ограничения в прыжковых движениях по сравнению с группой G1. У двух кроликов из группы G2 с вывихом тазобедренного сустава наблюдались наибольшие ограничения в прыжковых движениях.
При рентгенологическом обследовании группы G1 у девяти кроликов не было выявлено осложнений (рис. 2A и 2B). Однако у четырех кроликов наблюдались подвывихи тазобедренного сустава; у трех кроликов — на уровне M4, а у одного — на уровне M5 (рис. 2C и 2D). В группе G2 у восьми кроликов не было выявлено никаких осложнений, связанных с имплантатом (рис. 3A и 3B). У двух кроликов были обнаружены вывихи тазобедренного сустава на уровне M3, а в одном случае — подвывих на уровне M4. Как сообщалось ранее, у одного кролика на уровне M3 был выявлен перелом правой бедренной кости. Кроме того, у одного кролика на уровне M4 наблюдались литические поражения вертлужной впадины и пролиферация околосуставных тканей. Во всех случаях подвывиха и вывиха рентгеновские снимки показали, что стержень сместился в сторону вертлужного отверстия (рис. 3C и 3D).
Ультразвуковое исследование в группе G1 показало, что суставная поверхность не имела неровностей у 69,2% кроликов. Неровности суставной поверхности наблюдались у 30,8% кроликов с подвывихом тазобедренного сустава. LT не наблюдался в группах M3, M4 и M5. На стадии M3 наблюдалась дезорганизация ориентации мышечных волокон, которая улучшилась в группах M4 и M5. У трех кроликов с подвывихом тазобедренного сустава в группе M4 и у одного кролика с вывихом тазобедренного сустава в группе M5 наблюдалось утолщение суставной капсулы в группе M5. В группе G2 на ультразвуковом исследовании в группе M1 суставная поверхность не имела неровностей. На стадии M3 наблюдалась дезорганизация ориентации мышечных волокон и два вывиха тазобедренного сустава. В группе M4 наблюдался один подвывих тазобедренного сустава с выраженными признаками остеоартроза. Утолщение суставной капсулы было выявлено в двух случаях вывиха тазобедренного сустава и в одном случае подвывиха. В группе M5 наблюдалось улучшение организации мышечных волокон. Два вывиха тазобедренного сустава и тазобедренный сустав с остеоартрозом имели неровные суставные поверхности.
Макроскопическое и
гистологическое исследование
Макроскопическая оценка группы G1 показала умеренное утолщение капсулы и умеренное ремоделирование головки бедренной кости у 30% кроликов и отсутствие изменений у 70% кроликов. Поражения суставного хряща были классифицированы как 0-я степень у 23,1% кроликов, 15,4% — как 1-я степень, 30,8% — как 2-я степень и 30,8% — как 3-я степень, при этом также наблюдался подвывих сустава.
Макроскопическая оценка группы G2 показала умеренное утолщение капсулы у 53,8%, умеренное у 46,2% и интенсивное у 15,4% кроликов. Кроме того, повреждения суставного хряща были классифицированы у 30,8% кроликов как 1-я степень, у 38,4% — как 2-я степень и у 30,8% — как 3-я степень. У двух кроликов с 3-й степенью (15,4%) наблюдался вывих бедра из-за отторжения трансплантата (резорбция или смещение стержня). Целостность сухожильного трансплантата (рис. 4) была подтверждена у 76,92% кроликов, включая кролика, усыпленного через 15 дней после операции (М3) из-за перелома бедренной кости. У двух кроликов (15,4%) наблюдался разрыв сухожильного трансплантата в его проксимальном месте прикрепления (вертлужная впадина), связанный с вывихом бедра. У одного кролика (7,7%) наблюдался частичный разрыв внутрисуставного сухожильного трансплантата.
Гистологический анализ выявил характеристики ранней фазы лигаментизации сухожильного трансплантата с широко распространенными и однородными многоочаговыми участками коллагеновых волокон, соответствующими волокнам Шарпи на границе сухожилия и кости (рис. 5). Волокна находились на ранней стадии связывания с надкостницей, сопровождаясь наличием организованной соединительной ткани. В трансплантате наблюдались кровеносные сосуды, расположенные одновременно с 1–3 слоями хондроцитов, граничащими с костным трансплантатом. В группе G2 отмечалась более высокая частота трещин и неровностей на поверхности хряща по сравнению с группой G1. Наблюдалась толщина суставной капсулы. Однако волокна суставной капсулы имели сохраненную архитектуру.
В настоящем исследовании было показано, что трансплантат из полусухожильной мышцы может быть использован для замены LT с использованием техники «рычажного стержня»; однако были выявлены некоторые осложнения. Выбор трансплантата для LT обусловлен простотой забора, длиной трансплантата и минимальной заболеваемостью в области донорского участка. Трансплантаты из LT, полуперепончатой мышцы и надколенной связки являются наиболее часто используемыми у кроликов, особенно для замены передней крестообразной связки (Bi et al., 2015; Giordano et al., 2015). LT наиболее рекомендуется для незрелых скелетов из-за риска закрытия эпифизарной пластинки и деформации кости при использовании трансплантата из надколенной связки (Giordano et al., 2015). Это предположение также было учтено в настоящем исследовании в связи с возрастом кроликов. Походка кроликов не нарушалась после забора трансплантата, поскольку общее пяточное сухожилие состоит из пяточного сухожилия полусухожильной мышцы, трехглавой мышцы голени и сухожилия поверхностного сгибателя пальцев (Skalec, Janeczek & Czerski, 2019), и, вероятно, удаление LT компенсировалось другими группами мышц и сухожилий.
Аллотрансплантат сухожилия был подготовлен с использованием техники двойного пучка, аналогичной описанной для замены LT у людей (Amenabar & O’Donnell, 2012; Lindner et al., 2012; O’Donnell, Klaber & Takla, 2020). Однако несмотря на то, что сухожилие полусухожильной мышцы считается тонким, но прочным (Skalec, Janeczek & Czerski, 2019), малый диаметр сухожильного трансплантата у кроликов затруднял проведение швов через сухожилие, поэтому использовались петли из нейлоновых нитей.
Визуальный анализ походки не помог выявить осложнения, поскольку у кроликов с вывихом бедра (G2) хромота отсутствовала. С другой стороны, у домашнего кролика с вывихом бедра наблюдалась хромота без опоры на конечность, которая была купирована с помощью штифта и нейлоновой нити (Marinkovich et al., 2019).
Ультразвуковое исследование мышц показало более организованную структуру ткани в обеих группах на 5-м месяце, что свидетельствует о процессе восстановления, несмотря на тип хирургического вмешательства. С другой стороны, рентгенография и ультразвуковое исследование тазобедренных суставов выявили большее количество осложнений в группе G2 по сравнению с группой G1. Хотя тазобедренные суставы в группе G1 были стабилизированы с помощью капсулорафии, обнажение сустава было меньше, что оправдывало лишь возникновение подвывихов (n = 4). Вывихи (n = 2) и подвывихи (n = 1) тазобедренного сустава, обнаруженные в группе G2, были вызваны смещением стержня. Исследования на собаках и кошках с использованием различных типов стержней и шовного материала для замены LT также сообщали об осложнениях, включая вывихи, преждевременный разрыв шва, вырывание или поломку стержня и инфекцию (Kieves et al., 2014; Trostel & Fox, 2020; Mathews & Barnhart, 2021). Вывихи после применения техники фиксатора наблюдались у собак и кошек в диапазоне от 3% до 14,8% (Demko et al., 2006; Pratesi, Grierson & Moores, 2012; Mathews & Barnhart, 2021). Вероятно, использование стержня большего размера могло бы предотвратить вырывание в группе G2.
Прыжки кролика с использованием энергичных задних конечностей (McClure, 2020) переносят нагрузку на имплантат и могут способствовать риску осложнений. Ограничение активности или размещение конечностей в не несущих нагрузку поддерживающих повязках использовались для минимизации послеоперационных осложнений у мелких животных при лечении травматического вывиха бедра с использованием техники фиксации (Moores, 2006; Kieves et al., 2014; Trostel & Fox, 2020; Mathews & Barnhart, 2021). У пациентов-людей также показана ограниченная поддержка опоры на конечность в течение нескольких недель после хирургического вмешательства (Lindner et al., 2012; Philippon, Pennock & Gaskill, 2012). Некоторые из этих вмешательств трудно применять у кроликов, что является ограничением данной экспериментальной модели. Несмотря на это, целостность сухожильного трансплантата была подтверждена у 76,92% кроликов, что свидетельствует о его биомеханической прочности. Два случая разрыва сухожилия произошли в месте крепления стержня, что указывает на необходимость укрепления этого конца сухожилия.
Макроскопический анализ подтвердил, что у двух кроликов наблюдалось смещение стержня с частичным или полным разрывом трансплантата. Поскольку трансплантат не был идентифицирован при полном разрыве, была выдвинута гипотеза о процессе резорбции трансплантата. Резорбция трансплантата также наблюдалась у пациента с разрывом, лечившегося с использованием сухожилия полусухожильной мышцы, что было связано с ударом по трансплантату (Amenabar & O’Donnell, 2012). Такие факторы, как инфекция, удар и чрезмерное натяжение сухожильного трансплантата, приводят к недостаточной васкуляризации и препятствуют его приживлению (George, Dunn & Spindler, 2006). В данном исследовании наиболее вероятными причинами были удар по сухожилию и натяжение.
Исключая подвывихи и вывихи тазобедренного сустава в обеих группах, при визуальной и макроскопической оценке было выявлено больше поражений хряща в группе G2, чем в группе G1. У собак, леченных открытой репозицией и стабилизацией стержнем/штифтом с проволокой, остеоартроз наблюдался у 5,5% (Mathews & Barnhart, 2021). Артроскопическая реконструкция LT проводилась у людей (Philippon, Pennock & Gaskill, 2012; Lindner et al., 2012; O’Donnell, Klaber & Takla, 2020), что минимизирует травматизм по сравнению с традиционной открытой операцией. Кроме того, капсульный разрез для обнажения головки бедренной кости и вертлужной впадины при открытых операциях способствует снижению локальной стабильности. Нестабильность сустава связана с развитием остеоартроза (Blalock et al., 2015).
Гистологически, на границе между сухожилием и костью (головка бедренной кости, вертлужная впадина) наблюдались периостальные коллагеновые волокна (волокна Шарпея). В одном исследовании на кроликах с внутрисуставным аутотрансплантатом из полусухожильной мышцы, установленным через отверстия в большеберцовой и бедренной костях, наблюдалось со временем срастание трансплантата с фиброзной соединительной тканью, которая прилегала к костным трабекулам (Blickenstaff, Grana & Egle, 1997). Заживление границы сухожилие-кость, направленное на эффективную реконструкцию связок, может замедляться из-за дефицита кровоснабжения вследствие потери сосудов и костной ткани в месте сверления (Bi et al., 2015). В настоящем исследовании частичное прилегание коллагеновых волокон к периосту было обнаружено через 90 дней после операции, что указывает на влияние хирургического повреждения.
При гистологическом исследовании волокна суставной капсулы сохранили свою структуру. Биомеханическое исследование не выявило различий между капсулорафией тазобедренного сустава при использовании техники блочного шва с полигликолевой кислотой или титановыми анкерами у кроликов (Garcia Filho et al., 2012). Разрез капсулы и наложение швов способствуют утолщению капсулы, которое было более интенсивным при вывихе бедра, вероятно, в попытке улучшить стабилизацию сустава.
Настоящее исследование имеет
некоторые ограничения. Хирургический доступ к тазобедренному суставу требовал
более длинного разреза для оптимального доступа к головке бедренной кости, что
способствовало послеоперационному вывиху бедра; однако артроскопическая
хирургическая процедура на тазобедренном суставе кролика технически сложна, а
длина трансплантата из полусухожильной мышцы позволяет использовать только
технику двойного пучка. Таким образом, реконструкцию необходимо протестировать
с другими сухожильными трансплантатами..
Реконструкция LT с использованием аутологичного сухожилия полусухожильной мышцы в сочетании с стержнем-фиксатором показывает раннюю фазу приживления сухожильного трансплантата через 90 дней после операции у молодых кроликов. Существует вероятность осложнений, таких как перелом бедренной кости и отторжение трансплантата/фиксатора, и этому следует посвятить внимание в будущих исследованиях.
 |
| Рисунок 1: (А–I) Иллюстративная схема. Подготовка трансплантата из сухожилия полусухожильной мышцы для реконструкции LT у кроликов с использованием техники двойного пучка. |
 |
| Рисунок 2: Рентгенограммы в вентродорсальной (A и C) и медиолатеральной (B и D) проекциях через 90 дней после операции у кроликов группы 1. Тазобедренные суставы без осложнений (A и B) и правый тазобедренный сустав с подвывихом головки бедренной кости (C и D). |
 |
| Рисунок 3: Рентгенограммы в вентродорсальной (A и C) и медиолатеральной (B и D) плоскостях через 90 дней после операции у кроликов группы 2. Правый тазобедренный сустав с правильным расположением имплантата (A и B) и подвывих правого тазобедренного сустава вследствие смещения стержня (C и D). |
 |
| Рисунок 4: Макроскопическая оценка. Обратите внимание на целостность трансплантата из полусухожильной мышцы, использованного для замены круглой связки у двух кроликов (А и В) из группы 2. |
 |
| Рисунок 5: Микрофотографии периостальных коллагеновых волокон (волокон, подобных волокнам Шарпея) на границе сухожилия и кости. (A) Ранняя стадия образования волокон (стрелки) и жизнеспособных кровеносных сосудов визуализируются при увеличении 400X; (B) продвинутая стадия. HE 200X; (C) умеренная стадия распространения вдоль границы костно-трансплантационного слоя. Увеличение 200X. |
[viii] Дополнительная информация
Образование полусухожильной мышцы для забора трансплантата и длина полусухожильного сухожильного трансплантата после забора. DOI: 10.7717/peerj.14777/supp-1
Скачать https://dfzljdn9uc3pi.cloudfront.net/2023/14777/1/Supplemental_File_1.pdf
Подготовка полусухожильного сухожильного трансплантата с использованием техники двойного пучка. DOI: 10.7717/peerj.14777/supp-2
Скачать https://dfzljdn9uc3pi.cloudfront.net/2023/14777/1/Supplemental_File_2.pdf
Значения массы тела. Значения в группе 1 и группе 2. DOI: 10.7717/peerj.14777/supp-3
Скачать https://dfzljdn9uc3pi.cloudfront.net/2023/14777/1/Supplemental_File_3.xlsx
Amenabar T,
O’Donnell J. 2012. Arthroscopic ligamentum teres reconstruction using
semitendinosus tendon: surgical technique and an unusual outcome. Arthroscopy
Techniques 1(2):e169-e174
Bachy M, Sherifi I,
Zadegan F, Petrover D, Petite H, Hannouche D. 2013. Anterior cruciate ligament
surgery in the rabbit. Journal of Orthopaedic Surgery and Research 8(27):1-7
Baek JH, Chun YS,
Rhyu KH, Yoon WK, Cho YJ. 2018. Effect of ligamentum teres tear on the
development of joint instability and articular cartilage damage: an in vivo
rabbit study. Anatomical Science International 93(2):262-268
Bancroft JD, Gamble
M. 2008. Theory and practice of histological techniques. Beijing: Churchill
Livingstone Elsevier.
Bi F, Shi Z, Liu A,
Guo P, Yan S. 2015. Anterior cruciate ligament reconstruction in a rabbit model
using silk-collagen scaffold and comparison with autograft. PLOS ONE
10(5):e0125900
Blalock D, Miller
A, Tilley M, Wang J. 2015. Joint instability and osteoarthritis. Clinical
Medicine Insights: Arthritis and Musculoskeletal Disorders 8(317):15-23
Blickenstaff KR,
Grana WA, Egle D. 1997. Analysis of a semitendinosus autograft in a rabbit
model. American Journal of Sports Medicine 25(4):554-559
Byrd JW, Jones KS.
2004. Traumatic rupture of the ligamentum teres as a source of hip pain.
Arthroscopy 20(4):385-391
Cerezal L,
Kassarjian A, Canga A, Dobado MC, Montero JA, Llopis E, Rolón A, Pérez-Carro L.
2010. Anatomy, biomechanics, imaging, and management of ligamentum teres
injuries. Radiographics 30(6):1637-1651
DeCamp CE, Johnston
SA, Déjardin LM, Schaefer SL. 2016. The hip joint. In: DeCamp CE, Johnston SA,
Déjardin LM, Schaefer SL, eds. Handbook of Small Animal Orthopedics and
Fracture Repair. St. Louis: Elsevier. 468-517
Demko JL, Sidaway
BK, Thieman KM, Fox DB, Boyle CR, McLaughlin RM. 2006. Toggle rod stabilization
for treatment of hip joint luxation in dogs: 62 cases (2000–2005) Journal of
the American Veterinary Medical Association 229(6):984-989
Gallego M,
Villaluenga JE. 2019. Coxofemoral luxation in pet rabbits: nine cases. The
Journal of Small Animal Practice 60(10):631-635
Garcia Filho FC,
Guarniero R, Godoy Júnior RM, Pereira CAM, Matos MA, Garcia LC. 2012. Simple
suture and anchor in rabbit hips. Acta Ortopedica Brasileira 20(5):280-284
George MS, Dunn WR,
Spindler KP. 2006. Current concepts review: revision anterior cruciate ligament
reconstruction. The American Journal of Sports Medicine 34(12):2026-2037
Giordano M,
Falciglia F, Poggiaroni A, Aulisa AG, Savignoni P, Guzzanti V. 2015.
Histological changes of semitendinosus autograft after anterior cruciate
ligament reconstruction in an immature rabbit model. Journal of Experimental
Orthopaedics 2(1):17
Gray AJ, Villar RN.
1997. The ligamentum teres of the hip: an arthroscopic classification of its
pathology. Arthroscopy 13(5):575-578
Harasen G. 2005.
Coxofemoral luxations—part 2: surgical options. Canadian Veterinary Journal
46(6):546-547
Kieves NR, Lotsikas
PJ, Schulz KS, Canapp SO. 2014. Hip toggle stabilization using the TightRope®
system in 17 dogs: technique and long-term outcome. Veterinary Surgery
43(5):515-522
Lindner D, Sharp
KG, Trenga AP, Stone J, Stake CE, Domb BG. 2012. Arthroscopic ligamentum teres
reconstruction. Arthroscopy Techniques 2(1):e21-e25
Marinkovich M,
Guzman DS-M, Hawkins MG, Gleeson M, Chou P-Y. 2019. Open reduction and
stabilization of a luxated coxofemoral joint in a domestic rabbit (Oryctolagus
cuniculus) using a toggle-pin fixation. Journal of Exotic Pet Medicine 30:43-49
Mathews ME,
Barnhart MD. 2021. Risk factors for reluxation after toggle rod stabilization
for treatment of coxofemoral luxation in 128 dogs. Veterinary Surgery
50(1):142-149
McClure D. 2020.
Description and physical characteristics of rabbits. In: Merck veterinary
manual. (accessed 8 August 2022)
Meeson RL,
Strickland R. 2021. Traumatic joint luxations in cats: reduce, repair, replace,
remove. Journal of Feline Medicine and Surgery 23(1):17-32
Miwa Y, Carrasco
DC. 2019. Exotic mammal orthopedics. Veterinary Clinics of North America:
Exotic Animal Practice 22(2):175-210
Moores A. 2006.
Decision making in the management of hip luxations in dogs and cats. In
Practice 28(10):570-576
O’Donnell J, Klaber
I, Takla A. 2020. Ligamentum teres reconstruction: indications, technique and
minimum 1-year results in nine patients. Journal of Hip Preservation Surgery
7(1):140-146
O’Donnell JM,
Pritchard M, Salas AP, Singh PJ. 2014. The ligamentum teres-its increasing
importance. Journal of Hip Preservation Surgery 1(1):3-11
Philippon MJ,
Pennock A, Gaskill TR. 2012. Arthroscopic reconstruction of the ligamentum
teres: technique and early outcomes. The Journal of Bone and Joint Surgery.
British Volume 94(11):1494-1498
Pratesi A, Grierson
J, Moores AP. 2012. Toggle rod stabilisation of coxofemoral luxation in 14
cats. The Journal of Small Animal Practice 53(5):260-266
Skalec A, Janeczek
M, Czerski A. 2019. Anatomy and histology of the rabbit common calcanean
tendon. Anatomia, Histologia, Embryologia 48(5):466-475
Tomlinson JL. 2014.
Treatment of coxofemoral luxations. In: Bojrab MJ, Waldron DR, Toombs JP, eds.
Current Techniques in Small Animal Surgery. Jackson: Teton NewMedia. 991-997
Trostel CT, Fox DB.
2020. Coxofemoral joint luxation in dogs treated with toggle rod stabilization:
a multi-institutional retrospective review with client survey. Journal of the
American Animal Hospital Association 56(2):83-91
White BJ, Scoles
AM, Herzog MM. 2018. Simultaneous acetabular labrum and ligamentum teres
reconstruction: a case report. Journal of Hip Preservation Surgery 5(2):166-173
Yoshioka M, Coutts
RD, Amiel D, Hacker SA. 1996. Characterization of a model of osteoarthritis in
the rabbit knee. Osteoarthritis and Cartilage 4(2):87-98
Источник и
ссылки
Abibe RB, Rahal SC, Reis Mesquita LD, Doiche D, da Silva JP, Mamprim MJ,
Pinho RH, Battazza A, Alves CEF, Saunders WB. Ligamentum teres reconstruction
using autogenous semitendinosus tendon with toggle technique in rabbits. PeerJ.
2023;11:e14777 https://doi.org/10.7717/peerj.14777
Примечание
Лицензия: Данная статья находится в открытом доступе и распространяется в соответствии с условиями лицензии Creative Commons Attribution, которая разрешает неограниченное использование, распространение, воспроизведение и адаптацию в любом формате и для любых целей при условии надлежащего указания авторства.
Конфликт интересов: Авторы заявляют, что у них нет конфликта интересов.
Этика животных: Была предоставлена следующая информация, касающаяся этических разрешений (т.е., утверждающий орган и любые регистрационные номера): Разрешение на проведение исследования было получено от Комитета по этике использования животных при Школе ветеринарной медицины и животноводства кампуса Unesp в Ботукату (0125/2019).
Доступность данных: Была предоставлена следующая информация относительно доступности данных: Данные доступны в Respositório Institucional UNESP: Реконструкция круглой связки с использованием аутотрансплантата сухожилия, http://hdl.handle.net/11449/215401 .
Финансирование: Финансирование было предоставлено Исследовательским фондом Сан-Паулу (FAPESP № 19/14711-2), FINEP (Financiadora de Estudos e Projetos; грант 01.12.0530.00), CAPES (Координационный совет по повышению квалификации кадров высшего образования) и Национальным советом по научно-технологическому развитию (CNPq – PQ 301585/2017-2). Финансирующие организации не принимали участия в разработке дизайна исследования, сборе и анализе данных, принятии решения о публикации или подготовке рукописи.
Авторы и принадлежность
Rebeca Bastos Abibe – Кафедра ветеринарной
хирургии и репродукции животных, факультет ветеринарной медицины и
животноводства, Государственный университет Сан-Паулу, Ботукату, Сан-Паулу,
Бразилия
Sheila Canevese Rahal – Кафедра ветеринарной
хирургии и репродукции животных, факультет ветеринарной медицины и
животноводства, Государственный университет Сан-Паулу, Ботукату, Сан-Паулу,
Бразилия
Luciane dos Reis Mesquita – Кафедра ветеринарной хирургии и репродукции животных,
факультет ветеринарной медицины и животноводства, Государственный университет
Сан-Паулу, Ботукату, Сан-Паулу, Бразилия
Danuta Doiche – Кафедра ветеринарной хирургии и репродукции животных,
факультет ветеринарной медицины и животноводства, Государственный университет
Сан-Паулу, Ботукату, Сан-Паулу, Бразилия
Jeana Pereira da Silva – Кафедра ветеринарной хирургии и репродукции животных,
факультет ветеринарной медицины и животноводства, Государственный университет
Сан-Паулу, Ботукату, Сан-Паулу, Бразилия
Maria Jaqueline Mamprim – Кафедра ветеринарной
хирургии и репродукции животных, факультет ветеринарной медицины и
животноводства, Государственный университет Сан-Паулу, Ботукату, Сан-Паулу,
Бразилия
Renata Haddad Pinho – Кафедра ветеринарной
хирургии и репродукции животных, факультет ветеринарной медицины и
животноводства, Государственный университет Сан-Паулу, Ботукату, Сан-Паулу,
Бразилия
Alexandre Battazza – Департамент ветеринарной клиники, Школа ветеринарной
медицины и зоотехники, Государственный университет Сан-Паулу, Ботукату,
Сан-Паулу, Бразилия
Carlos Eduardo Fonseca Alves – Кафедра ветеринарной хирургии и репродукции животных,
факультет ветеринарной медицины и животноводства, Государственный университет
Сан-Паулу, Ботукату, Сан-Паулу, Бразилия
W. Brian Saunders – Кафедра клинических
наук о мелких животных, Техасский университет A&M, Колледж-Стейшен, Техас,
США
Ключевые слова
ligamentum capitis femoris, ligamentum teres, связка головки бедра, круглая связка, связка головки бедренной кости, пластика, реконструкция, открытая пластика, эксперимент, животные, кролик
NB! Добросовестная практика использования: копирование для целей критики, обзора, комментариев, исследований и частного изучения в соответствии с Законами об авторском праве: Copyright Laws of the US: 17 U.S.C. §107; Copyright Law of the EU: Dir. 2001/29/EC, art.5/3a,d; Copyright Law of the RU: ГК РФ ст.1274/1.1-2,7.